动物模型的设计原则
重复性
理想的动物模型应该是可重复的，甚至是可以标准化的。例如用一次定量放血法可造成出血，会si亡，这就符合可重复性和达到了标准化要求。shen、输尿管、心、肝、肺、脾等组织用4%福er马林固定(C。又如用狗做xin肌梗死模型照理很合适，因为它的冠状动脉循环与人相似，而且在实验动物中它适宜做暴露心脏的剖胸手术，但狗结扎冠状动脉的后果差异太大，不同狗同一动脉同一部位的结扎，其后果很不一致，无法预测，无法标准化。相反，大小白鼠、地鼠和豚鼠结扎冠脉的后果就比较稳定一致，可以预测，因而可以标准化。
实验动物各种体液、的采集方法
消化液的采集
(一) 唾液
1. 直接抽取法 在急性实验中， 可用吸管直接插入动物口腔或唾液腺导管抽吸唾液，此法非常简单，但从口腔抽吸唾液会有杂质混入。
2. 制造腮腺瘘法 在慢性实验中,收集狗的唾液，要用手术方法将腮腺导管开口移向体外，即以腮腺导管为中心，切成一直径约2～3cm的圆形粘膜片，将此粘膜片，与周围组织分开，穿过皮肤切口引到颊外,将带有导管开口的粘膜片与周围的皮肤缝合,腮腺分泌的唾液就流出颊外。结果jia亢方能降低jia亢大鼠xie清T3、T4、FT3、FT4含量,提高xue清TSH,以高剂量效果显著。这种方法可以收集到较纯净的唾液。
(二)胃液
1. 直接收集胃液法 急性实验时，先将动物，将插胃管经口插入胃内,在灌胃管的出口连一，用此可收集到胃液,此法适用于狗等大型动物。该饲料用酪蛋白或大豆作为蛋白来源，另加蔗糖、猪油、维生素粉、盐和定量的L-胱酸而组成。如是大鼠,需手术剖腹，从幽门端向胃内插入一塑料管，再由口腔经食道将一塑料管插入前胃，用pH7.5、35℃左右的生理盐水，以12ml/h的流速灌胃，收集流出液，进行分析。
2. 制备胃瘘法 在慢性实验中,收集胃液多用胃瘘法,如全胃瘘法、巴氏小胃瘘法、海氏小胃瘘法等。制备小胃是将动物的胃分离出一小部分，缝合起来形成小胃，主胃与小胃互不相通，主胃进行正常消化，从小胃可收集到纯净的胃液。该法可以编至1～9999号，此种方法常在饲养大量动物时作为终身号采用。应用该法，可以待动物恢复健康后，在动物清醒状态下反复采集胃液。
(三)胰液和胆汁
在动物实验中，主要是通过对胰总管和胆总管的插管而获得胰液或胆汁。狗的胰总管开口于十二指肠降部，在紧靠肠壁处切开胰管，结扎固定并与导管相连，即可见无色的胰液流入导管。1nmol/L、1nmol/LPGE2处理过的NR8383细胞培养上清液可以显著增加HUVEC细胞形成的小管面积，形成小管面积随着PGE2处理浓度的增加而增加（P<。大鼠的胰管与胆管汇集于一个总管，在其入肠处插管固定，并在近肝门处结扎和另行插管，可分别收集到胰液和胆汁。
有时也可通过制备胰瘘和胆囊瘘来获得胰液和胆汁。
科学家利用电子芯片技术遥控瘫痪实验鼠行走
据国外媒体报道，科学家创造了一种“遥控”实验小鼠。这使瘫痪的动物能够使用电子植入技术走路。 帮助一些因脊髓损伤而瘫痪的人接受康复治liao并使其行走更加自然。”科学家使用嵌入式芯片来远程使实验室鼠标的步态瘫痪。帮助人类再次行走。实验过程中的实验小鼠中间脊髓被切断，大脑信号无法发送到下脊髓，但是可以通过神经植入物将电流发送到脊髓神经，因此跑步机可以走路科学家可以通过改变电信号来控制实验大鼠的行为。2次实验之间清洗箱壁及底面，以免上次动物余留的信息影响下次实验结果。在实验中，鼠标走了1,000步，挑战了各种高度和长度的楼梯。 洛桑瑞士联邦技术学院的Gregoire Coultine是这项研究的主要研究者。刺激脊髓，使实验小鼠自然行走。您可以实时控制实验鼠标的前进方式和腿的高度。该研究是欧洲个神经步行项目的一部分，也是个计划的项目。明年夏天将在人类患者身上进行测试。科学家设计了一种用于临床试验的人性化设备。瑞士洛桑联邦理工学院的Silvestro Micera博士补充说：英国“废除解剖学”的Jarrod Bailey博士对此研究表示谴责。他指出：“正在进行实验的实验小鼠会遭以想象的困扰，公众将不会支持这项研究，不会割断和瘫痪动物的脊椎，并会对人类造成长期的脊髓损伤。”无法进行模拟。
以上信息由专业从事实验动物的英瀚斯于2024/3/27 9:11:48发布
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